Beleid inzake biologische afvalverwijdering

Download een volledige versie van het beleid.

Inleiding

Het UNC-CH-beleid inzake biologische afvalverwijdering bepaalt de juiste procedures voor de inzameling, ontsmetting en verwijdering van biologisch gevaarlijk afval dat in laboratoria is gegenereerd. Dit beleid is ontwikkeld om het risico van blootstelling te minimaliseren voor diegenen die in contact kunnen komen met biologisch gevaarlijk afval dat in een UNC-CH onderzoekslaboratorium is gegenereerd, in het bijzonder:

• laboratoriummedewerkers die biogevaarlijk afval genereren en verzamelen tijdens onderzoek,
• ondersteunend personeel dat het biogevaarlijk afval ophaalt, overdraagt en autoclaveert,
• huishoudelijk personeel dat verantwoordelijk is voor het vervoer van geautoclaveerd afval in gebouwen waarin UNC-CH-onderzoekslaboratoria zijn gehuisvest,
• facilitair personeel (loodgieters, elektriciens, HVAC, lassers, enz.), personeel van hulpdiensten, en onregelmatige bezoekers van het lab,
• en werknemers die verantwoordelijk zijn voor het wegvoeren van afval dat in UNC-CH onderzoekslaboratoria is gegenereerd.

De regels voor medisch afval van Noord-Carolina (15A NCAC 13 B .1200), vereisen dat “Gereguleerd Medisch Afval”, gedefinieerd als “bloed en lichaamsvloeistoffen in individuele containers van meer dan 20 ml, microbiologisch afval en pathologisch afval”, moet worden behandeld voordat het wordt verwijderd, zodat het afval ongevaarlijk wordt. Het meeste door laboratoria op de UNC-CH-campus geproduceerde biologisch gevaarlijk afval, zoals hieronder gedefinieerd, valt onder de door de staat gedefinieerde categorie van “microbiologisch afval” binnen 15A NCAC 13 B .1200. Biogevaarlijk afval dat in UNC-CH-onderzoekslaboratoria wordt gegenereerd en verzameld, moet naar behoren worden geautoclaveerd volgens de hieronder beschreven procedures. Dit proces verandert de biologische kenmerken van het afval, waardoor het potentieel om ziekten te veroorzaken wordt verminderd of geëlimineerd. Laboratoria met biologisch gevaarlijk afval dat niet specifiek in dit document wordt behandeld (zoals afval met meervoudige gevaren, bv. radioactief biologisch gevaarlijk afval) moeten met Milieu, Gezondheid en Veiligheid overleggen over alternatieve behandelings- en verwijderingsmethoden.

De procedures van dit beleid zijn consistent met de van toepassing zijnde secties van de OSHA Bloodborne Pathogens Standard 29 CFR 1910.1030.

Defining Laboratory-Generated Biohazard Waste

Al het biologisch gevaarlijk afval dat in de UNC-CH onderzoekslaboratoria wordt gegenereerd, zal op de juiste wijze worden behandeld voordat het wordt overgebracht en definitief wordt begraven op de stortplaats of verbranding. Dit biologisch gevaarlijk afval omvat:

• Materialen die besmet zijn of mogelijk besmet zijn tijdens de manipulatie of opruiming van materiaal dat is gegenereerd tijdens onderzoeks- en/of onderwijsactiviteiten waarvoor bioveiligheidsniveau 1, 2, of 3 of dierlijk of plantaardig bioveiligheidsniveau 1, 2, of 3 vereist is. Raadpleeg de sectie Biologische gevarenregistratie van uw laboratorium in het Veiligheidsplan voor laboratoria (Schema F) om deze materialen in uw laboratorium te identificeren.
• Menselijk vloeibaar bloed en lichaamsvloeistoffen.
• Menselijk weefsel en anatomische overblijfselen.
• Materialen die besmet zijn met menselijk weefsel of weefselculturen (primair en gevestigd) omdat deze worden gehanteerd op BSL-2.
• Dierlijke kadavers, lichaamsdelen, bloed, vloeistoffen en strooisel van dieren die besmet zijn met BSL2- en BSL3-agentia.

Reglementeerde tabel voor de verwijdering van medisch afval

Bloed en lichaamsvloeistoffen (Gereglementeerd medisch afval)	Behandeld met bleekmiddel of geautoclaveerd en afgevoerd via het riool.
Microbiologisch afval met inbegrip van organismen van bioveiligheidsniveau 1, 2 en 3: (Gereguleerd medisch afval)	Autoclaaf bij 121°C. (Autoclaven worden wekelijks getest met bio-indicatoren Geobacillus stearothermophilus) of chemisch behandeld en afgevoerd naar het riool.Let op: De NC Medical Waste Rules staan geen chemische desinfectie toe van gereguleerde vloeistoffen gevolgd door afvoer naar het riool, tenzij goedkeuring is verkregen van de NC Division of Waste Management.
Pathologisch afval (kadavers van met menselijke BSL1 en BSL2 besmette dieren, inclusief transgene muizen) (Gereguleerd medisch afval)	De dieren worden verbrand door leverancier (Stericycle)
Pathologisch afval (kadavers van met menselijke BSL3-ziekteverwekkers besmette dieren) (Gereglementeerd medisch afval)	Geautoclaveerd in het labo bij 121°C. (Autoclaven worden wekelijks getest met bio-indicatoren Geobacillus stearothermophilus). Na autoclaveren worden de dieren verbrand door een leverancier (Stericycle)
Pathologisch afval (kadavers van dieren die werden gebruikt voor in vivo testen van geneesmiddelen) (Gereglementeerd medisch afval)	Dieren worden verbrand door verkoper (Stericycle)
Onbesmette dierlijke karkassen	Dieren worden verbrand door verkoper (Stericycle)
Niet-gevaarlijke scherpe voorwerpen	Witte plastic scherpe voorwerpen containers worden naar stortplaats
Biohazardous Sharps	Rode plastic scherpe voorwerpen containers worden geautoclaveerd en vervolgens naar stortplaats

Raadpleeg de onderstaande grafiek voor een momentopname van de vier meest voorkomende biohazard afval inzamelmethoden. Deze grafiek is ook op ware grootte beschikbaar. Deze methodes worden verderop in de pagina in meer detail beschreven. Raadpleeg voor besmette kadavers, lichaamsdelen en strooisel het desbetreffende hoofdstuk in deze gids voor aanwijzingen over de verwijdering. Afval van biologisch gevaar dat afkomstig is uit aangewezen inperkingsgebieden van BSL-2 of hoger, moet worden vermeld in de sectie Registratie van biologische gevaren van het veiligheidsplan voor het laboratorium (schema F).

Biohazard Waste Collection Methods

Sharps

Inclusief items zoals:

• razorbladen,
• scalpels,
• lancetten,
• syringes met/zonder naalden,
• slidecovers, en
• specimenbuizen

In UNC-CH onderzoekslaboratoria, worden biologisch gevaarlijke scherpe voorwerpen rechtstreeks verzameld in rode, plastic containers die verkrijgbaar zijn bij FisherScientific (voorraad # 14830124 voor besmet, 1482664B voor niet-verontreinigd). Deze containers moeten voorzien zijn van het biohazard-symbool, gemarkeerd met een “x” met behulp van autoclaaf-indicatietape. Volgens de federale OSHA-voorschriften (CFR 1910.1030) moeten biologische risicolaboratoria het gebruik van scherpe voorwerpen zoveel mogelijk beperken en mogen naalden niet opnieuw worden afgedekt, opzettelijk worden gebogen, gebroken of anderszins met de hand worden gemanipuleerd. Om ongevallen door overvulling van de containers te voorkomen, moeten de containers voor verwijdering worden verwijderd wanneer ze voor 2/3 gevuld zijn. Als u de naaldencontainer uit een bioveiligheidskabinet haalt, moet u altijd de buitenkant van de container ontsmetten. Containers met scherpe instrumenten die met biologisch gevaarlijk materiaal zijn verontreinigd, moeten worden geautoclaveerd in een oranje autoclaveerbare zak waarop een “x” staat boven het biohazardsymbool van de zak. Na autoclaveren kunnen de zakken met de recipiënten met scherpe instrumenten bij het gewone huisvuil worden gezet. Niet-gevaarlijke scherpe voorwerpen moeten in de witte plastic scherpe voorwerpen containers worden gedaan. De containers met niet-gevaarlijke scherpe voorwerpen moeten bij het normale afval worden gedaan zodra ze voor 2/3 vol zijn.

Weliswaar kunnen kleine scherven verontreinigd gebroken glas in de bovengenoemde containers met scherpe voorwerpen worden gedaan, maar grote verontreinigde glasscherven moeten afzonderlijk worden geautoclaveerd in een hardwandige container (zoals een kartonnen doos) bekleed met een oranje biohazard zak met een autoclaaf-tape-indicator “x” over het biohazard-symbool van de zak. Plaats het plakband op de oranje zak voordat deze wordt gebruikt om de doos te bekleden, om te voorkomen dat deze in contact komt met biologisch gevaarlijk materiaal en scherpe voorwerpen. Het universele biohazardsymbool moet ook op de buitenkant van de doos te vinden zijn. Na autoclaveren kan het glasafval bij het gewone huisvuil.

Doe de kartonnen dozen die gebruikt worden voor het verzamelen van scherpe instrumenten/glas NIET in een autoclaafzak. Hierdoor wordt voorkomen dat er stoom doordringt tijdens het autoclaveren. Stoompenetratie is van cruciaal belang tijdens het decontaminatieproces. Vergeet niet de dozen te bekleden met een oranje autoclaafzak waarop een “x” staat boven het biohazardsymbool voordat u de doos bekleedt.

Research Lab/Clinic Pipetting

Voor grootschalige inzameling buiten het bioveiligheidskabinet van glazen (Pasteur) en plastic pipetten die onder de definitie van biologisch gevaarlijk afval vallen, moet u een prikbestendige buitenverpakking (zoals de doos waarin de pipetten werden geleverd) bekleden met een oranje autoclaafzak waarop een hittegevoelige autoclaafband “x” is aangebracht (verkrijgbaar bij FisherScientific als voorraadnummer #15-903) boven het biohazardsymbool. Om mogelijke blootstelling te voorkomen, moet de markeringstape “x” over het biohazardsymbool van de zak worden geplaatst voordat de zak met pipetten wordt gevuld. Het universele biohazardsymbool moet ook op de buitenste container zijn aangebracht. Wanneer de doos vol is, sluit u de binnenzak, waarbij u een opening laat voor het doordringen van stoom. Plak de buitendoos dicht met autoclave-tape. Gebruik geen gekleurd plakband om de doos te sluiten.

Binnen de biologische veiligheidskast

Voor vaak verwijderde kleinschalige verzameling, zoals steriel pipetteren in een biologische veiligheidskast, plaatst u een kleine oranje autoclaafzak in een hardwandige verzamelcontainer binnen de kast. Wanneer de zak voor 2/3 vol is, sluit u hem losjes, besproeit u hem met het juiste ontsmettingsmiddel en brengt u hem over naar een verzamelcontainer voor pipetten op grotere schaal die zich buiten de kast bevindt.Een ander alternatief voor het verzamelen van biogevaarlijke pipetten is om ze in een lange, hardwandige cilindrische container te plaatsen die gevuld is met een doeltreffend ontsmettingsmiddel. De pipetten moeten gedurende de aanbevolen tijd in het ontsmettingsmiddel blijven om ontsmetting te garanderen.Op de werktafel moeten de pipetpunten worden verzameld in een kleine autoclaafzak die bekleed is met een draadstandaard of een andere houder waarop het biogevaarsymbool is aangebracht. Wanneer de zak voor 2/3 gevuld is, sluit u hem losjes om stoom te laten doordringen, besproeit u hem met een ontsmettingsmiddel en doet u hem bij ander vast biologisch gevaarlijk afval.

Besmette vaste stoffen

Biohazard vaste stoffen bestaan uit:

• cultuurschalen, kolven
• petrischalen
• vast afval van culturen/voorraden van het testen en produceren van biologische stoffen
• handschoenen, jassen, maskers
• ander vast materiaal dat mogelijk besmet is volgens de definitie van biologisch gevaarlijk afval (hierboven)

De buitenste verzamelcontainer moet duurzaam en lekvrij zijn, een deksel hebben en zo ontworpen zijn dat hij door de housekeeping niet als gewoon afval kan worden aangezien. Deze container moet worden geëtiketteerd met een biohazard sticker. Draadkooien mogen niet als buitencontainer worden gebruikt.

Naast de voorschriften dat containers voor biologisch gevaarlijk afval duurzaam en lekvrij moeten zijn, een deksel moeten hebben en duidelijk moeten zijn geëtiketteerd, zijn alle UNC-laboratoria verplicht biologisch gevaarlijk afval in te zamelen in buitencontainers die rood zijn. Dit beleid stelt ook een maximumgrens aan de grootte van een container voor biologisch gevaarlijk afval van 15 gallon (57 l). De zakken voor biologisch gevaarlijk afval moeten oranje van kleur zijn. Fisher Scientific heeft oranje autoclaveerbare zakken in verschillende maten; neem contact op met de campusvertegenwoordiger of voor meer informatie.

De rode biohazardcontainer moet worden bekleed met een oranje, polypropyleen autoclaveerbare biohazardzak. Voordat de container met de oranje biohazardzak wordt bekleed, moet het biohazardsymbool en/of de markeringen op de zak worden gekruist met hittegevoelige autoclave tape (verkrijgbaar bij FisherScientific
als voorraadnummer 15-903). Het deksel moet op de biohazardcontainer blijven wanneer deze niet in gebruik is. Verwijder de zakken als ze voor 2/3 gevuld zijn. Plaats nooit glas of scherpe voorwerpen in deze containers.

vloeistoffen

Hoewel de regels en definities voor vloeibaar biologisch gevaarlijk afval enigszins verschillen van de procedures voor vast afval, is autoclaveren de methode bij uitstek voor de ontsmetting van het volgende:

• Dierlijk bloed/lichaamsvloeistoffen van dieren die besmet zijn met BSL2- en BSL3-agentia.
• Menselijke weefselcultuur, menselijke cellijnen (primair of gevestigd)
• Menselijke lichaamsvloeistoffen zoals gedefinieerd in het UNC Laboratory Exposure Control Plan
• Vloeibare groeimedia verwijderd uit menselijke weefselculturen

Geautoclaveerd vloeibaar afval mag rechtstreeks in het riool worden geloosd.

Chemische desinfectie kan een aanvaardbaar alternatief zijn voor autoclavering van vloeibaar biologisch gevaarlijk afval dat ontstaat in onderzoekslaboratoria bij UNC-CH, zoals bleekwaterbehandeling. Wanneer dit wordt gedaan, moet ervoor worden gezorgd dat er geen spatten ontstaan en moeten de afvoeren met grote hoeveelheden water worden gespoeld. Volgens de NC Medical Waste Rules is chemische desinfectie van gereguleerde vloeistoffen gevolgd door afvoer naar het riool niet toegestaan, tenzij hiervoor toestemming is verkregen van de NC Division of Waste Management. Gereguleerde vloeistoffen omvatten het volgende:

• vloeibare afvalmedia van cellen/weefsel gebruikt voor de vermeerdering van risicogroep 1, 2 of 3 pathogenen of toxines, inclusief die welke zijn geproduceerd in recombinant-DNA-procedures.
• “Microbiologisch afval” zoals gedefinieerd in de regelgeving voor medisch afval van North Carolina: bijv. culturen en voorraden van infectieuze agentia.
• van dieren die opzettelijk zijn besmet met microben, virale vectoren of toxines

Als u goedkeuring wilt krijgen voor chemische behandeling van besmettelijke vloeistoffen, moet u informatie verstrekken die de effectiviteit aantoont van de chemische stof die wordt gebruikt om de specifieke microbiologische agentia te behandelen, rekening houdend met factoren zoals temperatuur, contacttijd, pH, concentratie, doordringbaarheid en reactiviteit van organisch materiaal. Alle verzoeken om goedkeuring moeten via EHS worden ingediend bij de NC Division of Waste Management en worden gedocumenteerd in het Lab Safety Plan onder Schedule F (Biological Hazards). Bezoek de EHS-pagina Chemische behandeling van vloeibaar microbiologisch afval om na te gaan of voor de chemische behandeling van uw vloeibaar biologisch gevaarlijk afval goedkeuring is vereist.

De juiste opstelling van de afzuig-vacuümkolf

1. Primaire kolf – gebruikt om vloeistof op te vangen
2. Secundaire kolf (overvulkolf) minimaliseert spatten
3. In-line filter tussen secundaire kolf en vacuümbron (www.fishersci.com 09-744-75)
4. Vacuümleiding die af en toe wordt onderhouden door laboratoriummedewerkers of UNC-ondersteunend personeel

De primaire en secundaire kolven moeten een 10% bleekoplossing bevatten. De kolfoplossing moet ten minste eenmaal per week worden ververst om de dodingskracht van de bleekoplossing te waarborgen. Het afval van de kolven mag pas door de gootsteen worden afgevoerd nadat al het potentieel besmettelijke materiaal ten minste 20 minuten in contact is geweest.

OPMERKING: Als u een ander ontsmettingsmiddel dan een bleekoplossing gebruikt, is het mogelijk dat dit niet is goedgekeurd voor afvoer door de gootsteen en moet u contact opnemen met de bioveiligheidssectie van EHS (919-962-5507).

Drosophila

Een alternatief voor autoclaveren van Drosophila is het rechtstreeks dumpen van verdoofde vliegen in een container met een kleine hoeveelheid minerale olie of een fles met ofwel ethanol ofwel isopropanol. Als u niet van plan bent het materiaal te hergebruiken, moeten deze flessen worden geëtiketteerd als ethanol-, isopropanol- of minerale-olieafval om door EHS te worden opgehaald. Als u van plan bent het materiaal waarin u de Drosophila’s dumpt te hergebruiken, etiketteer de fles dan als gerecycleerde ethanol, isopropanol enz. Deze flessen met chemicaliën mogen niet door de gootsteen of het riool worden gegoten. Ze moeten worden weggegooid via het online ophaalprogramma voor gevaarlijk afval van EHS. U kunt het formulier online vinden.

Besmette kadavers, lichaamsdelen en beddengoed

Dierlijke kadavers worden afgevoerd via de afdeling Diergeneeskunde van laboratoria. Kadavers, lichaamsdelen en strooisel van met besmettelijke agentia geïnoculeerde dieren worden verwijderd door verbranding. Deze materialen moeten in door DLAM geleverde dozen worden gedaan en gemarkeerd voor verbranding. (Er mogen geen naalden of andere soorten metaal en geen PVC plastic in de inzameldozen worden gedaan. Gebruik alleen plastic zakken zonder PVC). Kadavers die besmet zijn met radio-isotopen of kankerverwekkende stoffen worden opgehaald door de dienst Milieu, Gezondheid en Veiligheid.

Menselijke weefsels/lichaamsdelen

• Herkenbare menselijke anatomische resten of weefsels en grote weefsels moeten worden verwijderd door verbranding. Overblijfselen die besmet zijn met gevaarlijke chemische of radioactieve stoffen moeten speciaal worden verwijderd en er moet contact worden opgenomen met EHS voor verwijdering.
• Onherkenbare menselijke weefsels kunnen worden geautoclaveerd en bij het normale afval worden gedaan. Als de weefsels chemisch geconserveerd zijn, kunnen ze worden afgevoerd als chemisch gevaarlijk afval.

Het veilig in- en uitladen van de autoclaaf

Verontreinigde materialen mogen nooit in gangen of andere openbare ruimten worden achtergelaten voordat ze worden geautoclaveerd. Biogevaarlijke zakken moeten in het laboratorium blijven tot ze klaar zijn om in de autoclaaf te worden geplaatst. Laat zakken nooit op de vloer naast de autoclaaf liggen… Zakken die gesloten zijn en klaar om in de autoclaaf te gaan, moeten zoals afgebeeld in een secundaire container worden geplaatst. Als de zakken naar de autoclaaf worden vervoerd, moeten ze in gesloten, hardwandige secundaire containers worden geplaatst.

Minimaliseer contact met biologisch gevaarlijk afval zo veel mogelijk. Biogevaarlijk afval mag nooit worden platgedrukt of naar beneden worden geduwd. Biogevaarlijke afvalcontainers moeten worden verwijderd voor autoclaveren wanneer ze voor 2/3 gevuld zijn. Indicatietape moet worden aangebracht wanneer de nieuwe autoclaafzak in de hardwandige buitencontainer wordt geplaatst; dit zal het hanteren van het biologisch gevaarlijk afval bij het verwijderen verminderen. Het hittegevoelige autoclaaflint moet in een “X”-patroon over het biorisicoteken worden geplaatst. De hittegevoelige tape moet van het type zijn dat van kleur verandert, zoals het type waar strepen op verschijnen na behandeling. Deze tape is verkrijgbaar bij Fisher Scientific onder nr. 15-903. Nadat de ontsmetting in de autoclaaf is voltooid, kunnen de bovenkanten van de zakken stevig worden dichtgeplakt met labtape.

Nadat de juiste stappen voor ontsmetting van autoclaafafval zijn gevolgd, zoals hieronder vermeld, wordt het ontsmette afval in een witte Rubbermaid Brute-container van 44 gallon of 32 gallon (met een drum dolly) geplaatst, bekleed met zwarte plastic vuilniszakken, en in de buurt van de autoclaaf geplaatst. Deze containers moeten worden voorzien van het opschrift “AUTOCLAVED/ DECONTAMINATED WASTE ONLY” (etiketten). Biohazardzakken die in de witte Brute-containers worden geplaatst en met de warmtegevoelige tape worden gemarkeerd, geven aan de huishouding aan dat het afval veilig is en klaar om uit het laboratorium te worden verwijderd en in de container te worden gedeponeerd.

Elke afdeling is verantwoordelijk voor het ter beschikking stellen van een voldoende aantal van deze containers, die verkrijgbaar zijn bij Fisher Scientific. De huishoudelijke dienst zal geen overlopend afval of afval in onbehandelde biohazardzakken verwijderen of anderszins behandelen.

Voorzorgsmaatregelen bij autoclaveren

Autoclaveren, of sterilisatie met stoom, is de meest betrouwbare procedure voor de vernietiging van alle vormen van microbieel leven. De juiste temperatuur en blootstellingsduur zijn kritische factoren voor de betrouwbaarheid van deze methode. Deze kritische factoren zijn afhankelijk van de penetratie van stoom in elk deel van de afvalstof. Daarom moet de gebruiker van de autoclaaf goed opletten dat er geen lucht wordt ingesloten. Als niet alle lucht tijdens de cyclus uit het afval kan ontsnappen, kan deze niet door stoom worden vervangen. Verzadigde stoom wordt gebruikt onder druk (ten minste 15 pond per vierkante inch) om gedurende ten minste 15 minuten een kamertemperatuur van ten minste 121 C (250 F) te bereiken. Deze tijd wordt gemeten nadat de temperatuur van het met stoom verzadigde materiaal dat wordt gesteriliseerd 121 C heeft bereikt.

De aan autoclaven verbonden gevaren omvatten extreme hitte en hoge druk en grote, zware deuren en laadwagen. Bij het gebruik van een autoclaaf moeten de volgende veiligheidsprocedures worden gevolgd:

1. Wordt vertrouwd met de gebruikershandleiding van de autoclaaf. Hoewel het principe voor elk hetzelfde is, kunnen de aanbevelingen van de fabrikant voor het gebruik sterk variëren.
2. Verbind de deuren en pakkingen van de autoclaaf stevig op hun plaats voordat u de autoclaaf in werking stelt om te voorkomen dat er plotseling stoom onder hoge druk vrijkomt. Sommige autoclaven hebben geen veiligheidsvergrendelingen die voorkomen dat de autoclaaf in werking treedt als de deur niet goed gesloten is. Als uw autoclaaf geen veiligheidsvergrendelingen heeft, moet u extra voorzorgsmaatregelen nemen om ervoor te zorgen dat de deuren gesloten zijn.
3. Als u een oudere autoclaaf hebt die weinig of geen hitteschil rond de buitenkant heeft, hang dan borden op of naast de autoclaaf die waarschuwen voor “Hete oppervlakken, blijf uit de buurt” om mensen aan het gevaar te herinneren. Stapel of bewaar geen brandbare materialen (karton, plastic, vluchtige of ontvlambare vloeistoffen, samengeperste gasflessen) naast een autoclaaf.
4. Doe geen autoclaaf in giftig, vluchtig of radioactief materiaal. Als u biologisch gevaarlijk afval hebt dat een van deze materialen bevat, neemt u contact op met EHS voor advies.
5. Wanneer een cyclus is voltooid, wacht u ongeveer 1-2 minuten nadat de drukmeter nul aangeeft voordat u de deur van de autoclaaf opent.
6. Wacht ten minste 30 seconden na het openen van de deur voordat u in de autoclaaf reikt of kijkt.
7. Open de deur langzaam en houd hoofd, gezicht en handen uit de buurt van de opening.
8. Laat de inhoud afkoelen voordat u deze uit de autoclaaf haalt.
9. Verwijder oplossingen langzaam en voorzichtig uit de autoclaaf; sommige oplossingen kunnen overkoken wanneer ze worden verplaatst of wanneer ze worden blootgesteld aan kamertemperatuur. Dikke, hittebestendige handschoenen, een veiligheidsbril of gelaatsscherm en een rubberen schort moeten worden gedragen bij het verwijderen van hete vloeistoffen uit de autoclaaf. Vloeistoffen moeten meer dan 1 uur staan voordat ze worden gehanteerd zonder hittebestendige handschoenen.
10. Morsingen onmiddellijk opruimen.
11. Meld storingen of ongevallen onmiddellijk aan uw leidinggevende.

Training

Alle werknemers die een autoclaaf gebruiken, moeten de online autoclaaftraining doorlopen. Om ervoor te zorgen dat onregelmatige gebruikers de juiste bedieningstechnieken niet verwaarlozen, moeten de bedieningsinstructies voor de autoclaaf in de buurt van de autoclaaf worden opgehangen.

Procedures voor de ontsmetting van afval in de autoclaaf

1. De autoclaaf moet minimaal 60 minuten worden gebruikt bij 121°C (250°F) of hoger voor het meeste biologisch gevaarlijk afval (zie onderstaande tabel). De tijd en temperatuur die voor elk type afval in het laboratorium worden gebruikt, moeten worden gevalideerd met behulp van biologische indicatoren om een effectieve sterilisatie te garanderen (zie onderstaande procedure). Sommige autoclaven zijn uitgerust om op hogere temperaturen te werken, waardoor de blootstellingstijd korter zou kunnen zijn.

Criteria voor autoclaveren van typische materialen

materiaal	temperatuur	tijd
wasgoed	121°C (250°F)	30 minuten
vuilnis (biohazard zakken met besmettelijk afval)	121°C (250°F)	1 uur
glaswerk	121°C (250°F)	1 uur
vloeistoffen	121°C (250°F), elke gallon	1 uur
Dieren	121°C (250°F)	8 uur

1. Gebruik de juiste instellingen voor de autoclaaf. Autoclaven kunnen instellingen hebben voor “VLOEISTOFFEN”, te gebruiken voor vloeibare materialen. De instellingen voor “VLOEISTOFFEN” werken langer bij lagere temperaturen om verdamping van vloeistoffen en morsen tot een minimum te beperken. Voor vast materiaal moet de instelling “DRY GOODS WITH VACUUM” worden gebruikt voor besmettelijk afval, omdat stoom en hitte dan het doeltreffendst tot in de diepste delen van grote zakken worden gebracht, waardoor de beste omstandigheden ontstaan voor het doden van hardnekkige organismen. “DRY GOODS WITHOUT VACUUM” mag alleen worden gebruikt voor schone voorwerpen die moeten worden gesteriliseerd. De afzuiginstellingen moeten ook geschikt zijn voor het soort afval dat in een autoclaaf wordt gedaan. Een snelle uitlaat moet worden gebruikt voor vaste voorwerpen en een trage uitlaat voor vloeistoffen.
2. Vast afval. Overvul de afvalzakken of de autoclaaf niet. Dit zal het doordringen van stoom belemmeren. Voeg ongeveer 50-100 ml (~¼ tot ½ kopje) water toe aan elke zak met vast afval om het doordringen van stoom in de zak te vergemakkelijken. Als er van nature water in de lading zit, is het toevoegen van extra water niet nodig. Houd de afvalzakken enigszins open om stoompenetratie mogelijk te maken. De zakken worden vóór het autoclaveren in roestvrijstalen of polypropyleen trays geplaatst.
3. Vloeibaar afval. Vloeistoffen moeten voor autoclavering in recipiënten van borosilicaat (Kimax of Pyrex) of polypropyleen worden gedaan. De recipiënten mogen niet voor meer dan 75% gevuld zijn. De doppen of stoppen op de recipiënten moeten worden losgedraaid. Verpakkingen met vloeistof mogen nooit in de autoclaaf. Dit kan leiden tot een explosie van oververhitte vloeistof. Vloeistofcontainers moeten in een roestvrijstalen of polypropyleen bak worden geplaatst met ¼ tot ½ inch water op de bodem van de bak. De bak moet worden geplaatst op een plank in de autoclaaf en niet op de bodem van de kamer.
4. N.C. medisch afval regels stellen dat autoclaven moeten worden voorzien van een chart recorder die nauwkeurig de tijd en temperatuur voor elke cyclus registreert.

Autoclaaf Waste Decontamination Cycle Testing and Verification

1. The N.C. Medical Waste Rules require that autoclaves be monitored under conditions of full loading for effectiveness weekly through the use of biological indicators. Geobacillus stearothermophilus-indicatoren moeten worden gebruikt met gemiddelde sporenpopulaties van 104 tot 106 organismen. Er zijn vele in de handel verkrijgbare biologische indicatoren met een keuze uit sporenampullen of sporenstrips met groeimedia.
2. Volg de instructies van de fabrikant van de biologische indicatoren. De meeste vereisen koeling bij bewaring.
3. Plaats de indicator in het midden van de afvalzak of het te autoclaveren materiaal. Het is het beste de indicator in de afvalzak te doen voordat deze volledig is gevuld. Om de indicator na sterilisatie gemakkelijker terug te vinden, kunt u hem met plakband vastmaken aan een felgekleurd vel papier of aan een lang touw dat uit de zak mag steken. Indicatoren kunnen ook in testafvalzakken worden geplaatst die gevuld zijn met materialen die een volledige lading voor de test simuleren.
4. Autoclaveer het afval volgens de normale procedures. Zodra de cyclus is voltooid en de inhoud is afgekoeld, haalt u de indicator uit de afvalzakken met de juiste beschermingsmiddelen. Prepareer en incubeer de indicator en een controle-indicator die niet geautoclaveerd is zoals aanbevolen door de fabrikant.
5. Controleer op tekenen van groei met regelmatige tussenpozen tijdens de incubatieperiode (8, 12, 24 en 48 uur). Er moeten tekenen van groei zijn op de controle-indicator die niet werd geautoclaveerd, anders is de test ongeldig. Als er tekenen van groei zijn op de indicator die in het afval is geplaatst, is het afval niet goed gesteriliseerd. De tijd, temperatuur en autoclaafprocedures moeten opnieuw worden geëvalueerd. Als een probleem met de autoclaaf wordt vermoed, moet onmiddellijk contact worden opgenomen met de facilitaire dienst voor reparatie.
6. Er moet een logboek van elke test worden bijgehouden, waarin het gebruikte type indicator, datum, tijd en resultaat van de test worden vermeld. Een logboek voor autoclaaftesten kan worden gedownload.
7. Het afval behoeft niet te worden bewaard totdat de testresultaten de doeltreffendheid bevestigen. Als uit de testresultaten blijkt dat de autoclaaf niet goed steriliseert, mag de autoclaaf niet voor afval worden gebruikt totdat de autoclaaf is gerepareerd. De eerste lading in de autoclaaf moet worden getest met een biologische indicator om de goede werking van de autoclaaf te verzekeren.

Preventief onderhoud van de autoclaaf

Bedieners van de autoclaaf moeten het volgende preventieve onderhoud aan hun autoclaaf uitvoeren om de autoclaaf effectief te houden:

1. Verwijder de plug zeef of afvoerzeef om ervoor te zorgen dat het vrij is van vuil, stof, of sediment dat zich kan verzamelen in het en het moet worden gereinigd indien nodig.
2. Reinig de binnenoppervlakken van residu’s verzameld van de stoom of materialen die worden gesteriliseerd indien nodig.
3. Visueel inspecteren van de pakkingen, deuren, planken en wanden voor residu opbouw of slijtage regelmatig.
4. Meld eventuele problemen met uw autoclaaf aan Facilities Services.